[求助]关于各个生化仪样本预稀释问题

kilytom · 发表于 2010-4-24 19:22

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请教一下各位老师：

生化的各种仪器样本预稀释是探针吸样本和去离子水在反应杯里稀释还是探针把去离子水打进样品杯里？

我记得日本是都吸在反应杯里的，其他仪器是怎么样的啊？请各位老师指导一下。

谢谢各位老师

郑振寰 · 发表于 2010-4-24 19:26

都在反应杯里稀释，专门有采样针的反应杯稀释位置。

kilytom · 发表于 2010-4-24 20:08

那老师，有没有探针吸了去离子水把水吐到样品杯里的这样稀释的仪器呢？或者能不能设置成探针吸去离子水把水吐到样品杯里？还有探针如果吸全血可不可以啊？会不会很容易堵了？

谢谢老师

郑振寰 · 发表于 2010-4-24 20:28

没有这样的设计，稍微正常的想想就行了，怎么可能破坏样本呢？直接稀释样本不就是破坏了样本了吗？除非你放入的样本就是人工稀释好的。

所有生化都可以进行血清或者血浆的样本测试。

不知道你这么问什么意思，你想干什么？以后有问题直接问你想问的，别这么瞎问，毫无意义。

kilytom · 发表于 2010-4-24 20:43

因为现在有公司在我们医院推直接上生化的糖化血红蛋白，说是不需要在外面稀释，直接放生化仪器上。

他们说是探针吸去离子水在样品杯里稀释后再做。

但我知道日本是不行的，我们是在用AU2700，他们说AU2700是把水吐样品杯里的也可以吸全血。

我们领导吸全血怕针堵了。

麻烦老师了。

谢谢老师，

郑振寰 · 发表于 2010-4-24 20:48

不可能的，没见过这样的生化。自动稀释的功能都有，但没有在样本杯里稀释的，你想想就行了，机器怎么知道你放了多少定量的样本？它又如何进行稀释？难道采样针吸出来定量的样本再吐到另外一个空样本杯里进行稀释？白白浪费一个样本杯和一个样本位？总不可能清洗样本杯吧？这事儿不是你听错了，就是医院没听明白，试剂厂家不会犯这样的错误。

kilytom · 发表于 2010-4-24 21:17

说是吸4微升到样品杯里去，然后吐水把4微升在样品杯里稀释了，然后再跟其他一样吸样做。

kilytom · 发表于 2010-4-24 21:18

不好意思，老师，没有一次说明白。

麻烦您了，老师。

郑振寰 · 发表于 2010-4-24 21:23

肯定是4ul吐到反应杯，加水稀释，然后再吸取吐到另外的反应杯去。你们肯定有一个或者几个环节没听明白。

kilytom · 发表于 2010-4-24 21:31

可能我们领导跟我说的时候没说明白

那老师针要是吸4微升全血了，是不是肯定不行啊？很容易堵了啊！

谢谢老师

郑振寰 · 发表于 2010-4-24 21:42

那不是全血，是血浆，做完这个项目加一个防止交叉污染步骤彻底清洗一下就是，这不是什么大问题。

岳世海 · 发表于 2010-4-25 16:11

做糖化血红蛋白用的是全血，抗凝的全血，并且要混匀后吸样。我接触到的都是手工稀释好后才上机的。AU2700是能预稀释，但是原始标本吸样前无法混匀呀，况且液面感应也不支持直接吸入全血，再说全血的流体粘度要大些，吸样精确度如何保证？除非上机前手工加入试剂破坏红细胞，我很想知道试剂厂家怎么解决这些问题的。

念影 · 发表于 2010-4-25 17:42

我觉得还是先稀释好了再上机做……不然很容易堵针的~

小东 · 发表于 2010-4-25 20:14

糖化血红蛋白标本上机前处理不是“稀释”，而是将红细胞破坏的过程，所以仪器的自动预稀释功能不适合也不能完成这项工作。

hwanyy · 发表于 2010-5-9 12:24

我们都是先进行手工稀释，待红细胞完全破坏后再上机测定。在仪器上稀释因为全血粘度大，很容易造成样本探针堵塞，也使反应杯清洗不干净，得不偿失。后者的问题看来难以解决。

liuyxg · 发表于 2010-7-6 05:32

这问题有点可爱，你的样品杯里的标本是定量的吗？

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